Was sind Getreidezysten-Nematoden - So stoppen Sie Getreide-Zysten-Nematoden


Von: Becca Badgett, Co-Autorin von How to Grow a EMERGENCY Garden

Die meisten Weizen-, Hafer- und Gerstensorten wachsen in der kühlen Jahreszeit und reifen bei wärmerem Wetter. Die Ernte wächst aus dem frühen Winter mit einer Ernte im späten Frühling und ist weniger anfällig für Schädlinge in der Schlepptauzeit. Es gibt jedoch Probleme, die während der kühlen Jahreszeit auftreten. Eines der wichtigsten Probleme sind Getreidezystennematoden. Wenn Sie neugierig sind und fragen: "Was sind Getreidezystennematoden?", Lesen Sie weiter, um eine Erklärung zu erhalten.

Getreidezysten-Nematoden-Info

Nematoden sind winzige Würmer, oft Spulwürmer und Schnittwürmer. Einige leben frei und ernähren sich von Pflanzenmaterialien wie Weizen, Hafer und Gerste. Diese können extreme Schäden verursachen und Pflanzen unverkäuflich machen.

Gelbe Flecken über der Erde können darauf hinweisen, dass Sie diesen Fadenwurm in der Ernte haben. Die Wurzeln können geschwollen, seilig oder mit flachem Wachstum verknotet sein. Kleine weiße Zysten im Wurzelsystem sind weibliche Nematoden, die mit Hunderten von Eiern beladen sind. Jugendliche richten den Schaden an. Sie schlüpfen, wenn die Temperaturen sinken und Herbstregen auftritt.

Warmes und trockenes Wetter im Herbst verzögert das Schlüpfen. Diese Nematoden treten normalerweise erst nach dem zweiten Pflanzen einer Getreidepflanze auf demselben Feld auf und entwickeln sich.

Getreidezysten-Nematoden-Kontrolle

Erfahren Sie, wie Sie Müsli-Zystennematoden stoppen können, um solche Probleme mit Ihren Pflanzen zu vermeiden. Einige Möglichkeiten, dies zu tun, sind:

  • Früh pflanzen, damit sich ein gutes Wurzelsystem entwickeln kann.
  • Wachsen Sie resistente Getreidesorten an, um die Wahrscheinlichkeit von Nematoden zu begrenzen.
  • Fruchtwechsel alle ein oder zwei Jahre. Die ersten Pflanzperioden sind normalerweise nicht, wenn Getreidezystennematoden auftreten. Wenn ein schwerwiegender Befall auftritt, warten Sie zwei Jahre, bevor Sie erneut eine Getreideernte an Ort und Stelle pflanzen.
  • Üben Sie eine gute Hygiene und halten Sie Unkraut so weit wie möglich von Ihren Reihen fern. Wenn Sie im Sommer an derselben Stelle eine alternative Ernte pflanzen, halten Sie auch das Unkraut niedrig.
  • Ändern Sie den Boden, um die Entwässerung zu verbessern und den Boden so fruchtbar wie möglich zu halten.

Fruchtbarer, unkrautfreier und gut durchlässiger Boden ist weniger wahrscheinlich, um diese Schädlinge zu bekämpfen. Getreidezystennematoden ernähren sich nur von Gräsern und Getreidekulturen und verwenden diese Pflanzen als Wirte. Pflanzen Sie im Frühjahr eine Nicht-Getreide-Ernte, um die verbleibenden Menschen zu ermutigen, ausziehen zu müssen, da kein Wirt und keine Nahrungsmittelknappheit vorliegen.

Sobald Ihr Feld befallen ist, ist die Bekämpfung von Getreidezystennematoden nicht mehr praktikabel. Es ist sehr gefährlich, Chemikalien für diese Pflanzen zu verwenden, und die Kosten sind unerschwinglich. Verwenden Sie die obigen Tipps, um Ihr Feld frei von Schädlingen zu halten.

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Abstrakt

Wirtsinduzierte Gen-Stummschaltung für Nematodenresistenz in Pflanzen. (A) und (B): Die doppelsträngige RNA (dsRNA) -Sequenz des Ziel-Nematoden-Effektor-Gens wird in die Pflanze transformiert, die vom pflanzlichen DICER-Enzym in kleine interferierende RNAs (siRNAs) geschnitten wird. (C), (D) und (E): Diese siRNAs werden von den Nematoden über ihre Stilette aufgenommen, die vom RISC-Komplex nachgewiesen werden, der an mRNA (komplementär zu den siRNA-Sequenzen) des Zieleffektorgens bindet. (F) und (G): Darauf folgt die Aktivierung von Nematoden-DICER, um die doppelsträngige RNA zu schneiden und die mRNA des Ziel-Nematoden-Effektor-Gens abzubauen. Wiedergabe von Ali et al. [10].


Heterodera ciceri (Kichererbsenzystennematode)

Werkzeugkasten

Heterodera ciceri (Kichererbsenzystennematode)

Index

  • Bilder
  • Identität
  • Taxonomischer Baum
  • Anmerkungen zur Taxonomie und Nomenklatur
  • Beschreibung
  • Verteilung
  • Verteilungstabelle
  • Risiko der Einführung
  • Lebensraum
  • Wirte / Arten betroffen
  • Wirtspflanzen und andere betroffene Pflanzen
  • Wachstumsstadien
  • Symptome
  • Liste der Symptome / Anzeichen
  • Biologie und Ökologie
  • Natürliche Feinde
  • Pfadvektoren
  • Pflanzenhandel
  • Einschlag
  • Erkennung und Inspektion
  • Ähnlichkeiten zu anderen Arten / Bedingungen
  • Prävention und Kontrolle
  • Verweise
  • Verteilungskarten

Zusammenfassung

  • Zuletzt bearbeitet
  • 10. Dezember 2020
  • Datenblatttyp (e)
  • Invasive Arten
  • Pest
  • Bevorzugter wissenschaftlicher Name
  • Heterodera ciceri
  • Bevorzugter gebräuchlicher Name
  • Kichererbsenzystennematode
  • Taxonomischer Baum
  • Domain: Eukaryota
  • Königreich: Metazoa
  • Stamm: Nematoda
  • Klasse: Secernentea
  • Bestellung: Tylenchida

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Bilder

TitelSEM von H. ciceri
BildbeschriftungWeiblicher Hals und Ausscheidungsporen (Pfeil). Maßstabsbalken = 100 um.
Urheberrechte ©Franco Lamberti / CNR - Istituto di Nematologia Agraria
TitelSEM von H. ciceri
BildbeschriftungEndkegel, a = Anus. Maßstabsbalken = 100 um.
Urheberrechte ©Franco Lamberti / CNR - Istituto di Nematologia Agraria
TitelSEM von H. ciceri
BildbeschriftungUnfenestrierte Vulvazapfen mit ineinandergreifendem Kutikularmuster, das sich über große Entfernungen in Vulvabereiche erstreckt. Maßstabsbalken = 10 um.
Urheberrechte ©Franco Lamberti / CNR - Istituto di Nematologia Agraria
TitelAbschnitt der Kichererbsenwurzel mit Befall
BildbeschriftungMit H. ciceri befallene Wurzel, die die weiblichen Nematoden (n) und Syncityalzellen zeigt, die fast den gesamten Stelaranteil einnehmen und auf Xylem (xe) - und Phloemelemente drücken.
Urheberrechte ©Nicola Greco
TitelBefallene Kichererbsenwurzel
BildbeschriftungKichererbsenwurzel stark mit H. ciceri befallen. Beachten Sie die verschiedenen Weibchen (f) und Zysten (c) des Fadenwurms, die von kleinen nekrotischen Bereichen (A) umgeben sind, und deren Zitronenform (B). Maßstabsbalken = 450 um.
Urheberrechte ©Franco Lamberti / CNR - Istituto di Nematologia Agraria
TitelBefallene Linsenwurzel
BildbeschriftungLinsenwurzel mit zahlreichen Weibchen (f) von H. ciceri. Beachten Sie das Fehlen der nekrotischen Bereiche an der Wurzel um die Weibchen.
Urheberrechte ©Nicola Greco
TitelBefallene Kichererbsenwurzeln
BildbeschriftungMit H. ciceri befallene Kichererbsenwurzeln. A) Oberflächliche nekrotische Bereiche (Pfeil) an den Penetrationsorten von Jugendlichen der zweiten Stufe. B) Nekrotische Symptome und eine Frau im vierten Stadium (Pfeil), die das Rhizoderm bricht.
Urheberrechte ©Nicola Greco
TitelSchadenssymptome bei Kichererbsen
BildbeschriftungEine Kichererbsenernte in Nordsyrien mit starker Vergilbung durch starken Befall von H. ciceri.
Urheberrechte ©Nicola Greco
TitelSchadenssymptome bei Kichererbsen
BildbeschriftungAuswirkungen der Zunahme der Bodenpopulationsdichte (von rechts nach links) von H. ciceri auf das Wachstum von Winterkichererbsen (Vordergrund) und Linsen (Hintergrund). Beachten Sie, dass der Schweregrad der gleichen Nematodendichte bei Kichererbsen viel höher ist als bei Linsen. Zahlen sind Eier des Fadenwurms / cm³ Bodens.
Urheberrechte ©Nicola Greco

Identität

Bevorzugter wissenschaftlicher Name

Bevorzugter gebräuchlicher Name

EPPO-Code

Taxonomischer Baum

  • Domain: Eukaryota
  • Königreich: Metazoa
  • Stamm: Nematoda
  • Klasse: Secernentea
  • Bestellung: Tylenchida
  • Familie: Heteroderidae
  • Gattung: Heterodera
  • Art: Heterodera ciceri

Anmerkungen zur Taxonomie und Nomenklatur

Beschreibung

Wie bei allen Arten der Gattung hat H. ciceri vier Jugendstadien, die Erwachsenenstadien und schließlich die Zystenstadien. Zysten enthalten viele Eier (100-400). Sexueller Dimorphismus ist sehr ausgeprägt.

Länge 134 (123-143) µm Breite 50 (48-53) µm Länge / Breite-Verhältnis 2,5 (2,4-2,8) Eierschale unskulpturiert und hyalin. Jungtier der zweiten Stufe viermal in der Eierschale gefaltet.

Vermiform. Länge 525 (440-585) µm Stilettlänge 28,6 (27-30) µm maximale Breite in der Mitte des Körpers 21 (19-22) µm Schwanzbreite am Anus 14-15 µm, Schwanzlänge 60 (53-72) µm Länge der Hyaline Schwanzabschnitt 36 (31-42) µm Kopfspitze zum mittleren Kolbenabstand 82 (80-86) µm Kopfspitze zum Ausscheidungsporenabstand 118 (105-128) µm laterale Feldbreite 4-5 µm, 1/4 der Körperbreite dorsal Drüsenöffnung 5-6 µm hinter den Stilettknöpfen. Der Kopf halbkugelförmig versetzt eine dorsal-ventral verlängerte orale Bandscheibenplatte und zwei abgerundete laterale Sektoren mit großen halbmondförmigen amphidialen Öffnungen. Stilett robust, Knöpfe 2-2,5 µm lang, 4-5 µm breit mit konkaven Vorderflächen. Ösophagusdrüsen gut entwickelt, 37% (30-42) Körperlänge vom Kopf. Hemizonid deutlich und zwei Ringe lang, 1-2 Ringe vor der Ausscheidungsporen. Ovales Genitalprimordium, 13-15 um lang, 10-13 um breit, 218 (210-232) um vor der Schwanzspitze. Kutikuläre Annulationen deutlich. Seitenfeld mit vier Einschnitten, 20-25% der Körperbreite mit belüfteten Außenbändern. Schwanz unregelmäßig annuliert, sich gleichmäßig und ziemlich abrupt zu einem fein gerundeten Ende verjüngend, mit einem terminalen hyalinen Anteil von 54 (48-58)% der Schwanzlänge.

Länge ohne Hals 773 (550-950) µm Breite 451 (300-520) µm Längen- / Breitenverhältnis 1,7 (1,5-2) Stilettlänge 30 (29-31) µm Rückendrüsenöffnung 5-6 µm Ausscheidungsporen 158 ( 154-169) um vom vorderen Ende entfernt. Körper typischerweise zitronenförmig mit gut definiertem Hals und hervorstehendem Endkegel. Erwachsene weibliche undurchsichtige weiße Farbe, die zu Beginn der Bräunung gelb und dann gelblich-braun wird. Gelegentlich kann eine dünne subkristalline Schicht den gesamten weiblichen Körper bedecken. Gelatinematrix, die nach den Weibchen vorhanden ist, wird gravid, enthält jedoch nur sehr selten 1-2 Eier. Vulva ein endständig positionierter Querschlitz. Anus subterminal, befindet sich in einer Vertiefung mit einem Durchmesser von 7 bis 10 um. Die Nagelhaut ist in der Mitte des Körpers durch zickzackförmige äußere Rippen verziert, aber die Verzierung des Halsbereichs und des Kegels besteht aus einer Reihe ungebrochener Linien, die in der Endansicht der Rasterelektronenmikroskopie als eine Anzahl konzentrischer Kreise erscheinen, die die Vulva umgeben Bereich.

Länge ohne Hals 796 (570-930) µm Breite 452 (350-550) µm Verhältnis 1,77 (1,56-2,37) Hals 115 (90-160) µm. Zysten sind typischerweise zitronenförmig mit einem ausgeprägten Hals und einem hervorstehenden Kegel. Der Hals kann versetzt und nach hinten gekrümmt sein. Zysten, die gut mit unregelmäßigen Zick-Zack-Graten verziert sind und ein feines Netzwerk über dem Körper bilden. Ein radiales Muster von 15 bis 20 geraden Graten an der Spitze des Vulvakegels, einschließlich der semifenestralen Bereiche vor der Fensterung. Ausscheidungsporen mit einem Durchmesser von 10 bis 14 um innerhalb einer Vertiefung und umgeben von 3-4 durchgehenden Kutikularkämmen. Zysten teilweise oder vollständig mit einer dünnen, weißen subkristallinen Schicht bedeckt.

Zysten ambifenestrate semifenestrae halbkreisförmig und nicht gleich.

Fenestrallänge 40 (32-52) µm maximale Fenestralbreite 27 (20-37) µm Semifenestrallänge 17 (13-20) µm Länge des Vulvaschlitzes 50 (43-60) µm. Zahlreiche markante, dunkelbraune Bullae, die bei den meisten Zysten unregelmäßig am Rand des Vulvakegels auf und unter dem Unterbrückenniveau verteilt sind. Die Unterbrücke ist gut entwickelt (125 (115-160) µm lang) und liegt 78-86 µm unter der Spitze des Vulvakegels mit Furkatenden und zentraler Verdickung.

Länge 1308 (1235-1448) µm maximale Körperbreite 29-30 µm Stilettlänge 29 (28-30) µm Spicula Länge entlang der Achse 36 (34-38) µm Gubernaculum 9-10 µm Kopfspitze bis Ausscheidungsporenabstand 170 (153- 180) um. Männer sind in dieser Art reichlich vorhanden. Sie sind vermiform, typischerweise nach Hitzerelaxation offen C-förmig, mit einem kurzen, stumpf gerundeten Schwanz, etwa 1/3 der Körperbreitenlänge und einem langen (10-14 um) Cloacalrohr, das in einer kreisförmigen Öffnung endet. Kopfbereich halbkugelförmig, 5-6 µm lang und 10 µm breit, vom Körper versetzt. Prestoma rechteckig geformt, in der Mitte der leicht erhabenen oralen Bandscheibenplatte gelegen. Labiale Scheibenplatte, die teilweise mit den abgerundeten subdorsalen und subventralen Paaren von Lippensektoren verschmolzen ist. Große amphidiale Öffnungen liegen zwischen der Labialscheibe und den ellipsoiden lateralen Sektoren. Hinter den Lippensektoren sind die Kopfringe unregelmäßig und unvollständig, mit Ausnahme des Basalrings, der groß und weniger durch Längsstreifen unterteilt ist. Robustes Stilett mit kephalem Rahmen, auch robust mit abgerundeten Basalknöpfen mit einer Breite von 5 bis 6 µm. Die Dorsaldrüsenöffnung öffnet sich 5-6 µm hinter den Stilettknöpfen. Medianes Ösophagusbirnenoval, 25 x 10 µm, mit mäßig entwickelter Klappe 98-117 µm von der Kopfspitze entfernt. Hemizonid auffällig, 2 Annuli lang, 9-12 Annules vor (13-21 µm) vor der Ausscheidungspore gelegen. Die Ausscheidungsporen befinden sich 170 (153-180) um vom vorderen Ende entfernt und sind durch Rasterelektronenmikroskopie als kleine Poren mit einem Durchmesser von etwa einer halben Ringbreite sichtbar. Testis Single nicht reflektiert und nimmt 61-68% der Körperlänge ein. Die Spicules sind bogenförmig und verjüngen sich distal. Gubernaculum mit leichter ventraler Krümmung, nicht verziert. Das laterale Feld hat vier äquidistante Einschnitte und beträgt etwa 1/4 der Körperbreite in der Mitte des Körpers. Vorne beginnt das Feld an den 6-8. Körperringen als drei Linien, die zwei regelmäßig isolierte Banden bilden.

Verteilung

Verteilungstabelle

Die Verteilung in dieser Übersichtstabelle basiert auf allen verfügbaren Informationen. Wenn mehrere Referenzen zitiert werden, können sie widersprüchliche Informationen zum Status enthalten. Weitere Details zu einzelnen Referenzen finden Sie im Abschnitt Details zur Verteilungstabelle, die Sie unter Bericht erstellen auswählen können.

Europa

Risiko der Einführung

Lebensraum

Wirte / Arten betroffen

Wirtspflanzen und andere betroffene Pflanzen

Wachstumsstadien

Symptome

SYMPTOME - BESCHREIBUNG
Die Hauptsymptome an den Wurzeln von Kichererbsen sind das Vorhandensein von weißen und gelben Weibchen im Stadium der Blüte bis zum frühen Podding und von braunen Zysten in späteren Stadien (spätes Podding bis zum Altern). In früheren Pflanzenstadien und bei starkem Befall erscheinen kleine nekrotische Flecken (2-3 mm lang und 0,5 mm breit), die durch jugendliches Eindringen verursacht werden, in Längsrichtung an den Wurzeln, von deren Zentrum das vierte und erwachsene Stadium des Fadenwurm wird hervorstehen. Die Rhizobiumknotenbildung stark befallener Wurzeln ist reduziert.

Die Symptome an Luftpflanzenteilen sind nicht spezifisch. Sie sind diejenigen, die für eine Pflanze charakteristisch sind, deren Wurzelsystem beschädigt ist, so dass die Wasser- und Nährstoffaufnahme beeinträchtigt wird. Pflanzen mit stark befallenen Wurzeln sind verkümmert, gelblich, altern früher und haben eine begrenzte Anzahl von Blüten und Schoten, die leer sein können. Die Schwere dieser Symptome korreliert mit der Intensität der Populationsdichte des Fadenwurms im Boden, und im Allgemeinen wird der Befall ab der frühen Blüte offensichtlich.

Liste der Symptome / Anzeichen

SchildLebensphasenArt
Wachstumspunkt / Zwerg-Stunting
Blätter / vergilbt oder tot
Wurzeln / Gallen entlang der Länge
Wurzeln / nekrotische Streifen oder Läsionen
Stängel / Verfärbungen
Ganze Pflanze / Verfärbung
Ganze Pflanze / Zwerg
Ganze Pflanze / frühe Seneszenz

Biologie und Ökologie

Der Nematode überlebt im Boden als Zyste in Abwesenheit von Wirtspflanzen oder unter ungeeigneten Umweltbedingungen. Es entwickelt sich normalerweise von Winter bis Frühling, aber auf dem anatolischen Plateau in der Türkei entwickelt es sich auch im Sommer. Wenn eine Wirtspflanze gesät wird, normalerweise vom Spätherbst bis zum frühen Frühling, wird der Nematode durch Wurzelexsudate zum Schlüpfen angeregt. Jungtiere im zweiten Stadium, die aus in Zysten enthaltenen Eiern hervorgehen, sind das einzige infektiöse Stadium, in dem sie in den Boden wandern. Wenn eine Wurzel angetroffen wird, dringen sie in die Nähe der Spitze ein und bewegen sich einige mm darin. Dann setzen sie ihre Köpfe in den Gefäßzylinder ein, werden sesshaft und stimulieren die Bildung von Synzytialzellen um ihre kephale Region, von der sie sich ernähren. Der Fadenwurm durchläuft dann drei Moults, die zu Jugendlichen der dritten und vierten Stufe und dann zu Erwachsenen werden. Die Lebensdauer der verschiedenen Stadien wird stark von den Umgebungsbedingungen beeinflusst. Nach der Befruchtung produziert das Weibchen einen kleinen Eiersack aus einer gallertartigen Matrix und beginnt, Eier zu produzieren. Alle Eier bleiben im weiblichen Körper erhalten und gelegentlich werden einige (1-2) in den Eiersack gelegt. Wenn die Weibchen alt sind oder die Umweltbedingungen ungeeignet werden (Temperatur um 30 ° C, niedriger Bodenfeuchtigkeitsgehalt, Seneszenz der Wirtspflanze), verwandelt sich das Weibchen in eine Zyste, indem es seine ebenfalls braune Nagelhaut verdickt und so die darin enthaltenen Eier schützt. Eier entwickeln sich embryogen und Jungtiere der zweiten Stufe bleiben in der Eierschale gewickelt. Zysten lösen sich leicht von den Wurzeln und bleiben im Boden. Eier können mehrere Jahre in Zysten lebensfähig bleiben (5-10).

Die Bildung von Syncytialzellen ist eine Voraussetzung für die Entwicklung von Nematoden. Diese Zellen sind nur wenige (2-3) und 5-6 Tage nach der Nematodeninvasion klein, nehmen jedoch an Zahl zu (7-10) und wachsen 20 Tage später und nehmen somit ein fast der gesamte Gefäßbereich. Dies führt zu einer Störung der Xylem- und Phloemelemente und einer Beeinträchtigung der Wurzelfunktion. Der distale Teil der Wurzel kann ebenfalls sterben.

Sexueller Dimorphismus ist im vierten Stadium offensichtlich und bei Erwachsenen ausgeprägt. Jugendliche Frauen bleiben sitzend, während sie sich häuten, und schwellen immer mehr an, bis sie zitronenförmig sind. Viertes Stadium oder erwachsene Frauen brechen die Wurzelrinde und werden von außen sichtbar. Männer sind bis zum vierten Jugendstadium sesshaft und endoparasitisch und leben dann als Erwachsene frei im Boden.

Eier werden nicht ruhend oder durchlaufen ein Stadium der Diapause (Greco et al., 1992b). Die höchste Schlupfrate tritt auf, wenn die Temperatur 15 bis 25 ° C beträgt, während der Schlupf bei 5 oder 30 ° C gleich Null und bei 10 ° C vernachlässigbar ist. Einige Jungtiere können aus Eiern hervorgehen, die in Weibchen enthalten sind. Die Penetration von Jungtieren der zweiten Stufe in Kichererbsenwurzeln erfolgt bei 10 und 25 ° C gleich gut. Bei 8 ° C dringen auch Jungtiere in die Wurzeln ein, entwickeln sich aber nicht weiter. Die minimale Basaltemperatur für die Entwicklung beträgt 10 ° C, während bei 30 ° C die Wurzelinvasion durch Jugendliche unterdrückt wird (Kaloshian et al., 1986a).

Bei 20 ° C sind die Tagesgrade, die erforderlich sind, um verschiedene Entwicklungsstadien innerhalb der Wurzeln von Kichererbsen zu erreichen, 80, 120, 180, 190 und 370 für Jugendliche im dritten und vierten Stadium, Erwachsene, Eier bzw. Zystenbildung. Jungtiere der ersten und zweiten Stufe sind 15 bzw. 17 Tage nach ihrer Bildung in den Eiern sichtbar (Kaloshian et al., 1986b).

Unter Feldbedingungen in Syrien können Weibchen bis Mitte März oder April an den Wurzeln von Winter- bzw. Frühlingskichererbsen gesehen werden. Zysten entwickeln sich Anfang oder Ende April. Bei der Ernte (Anfang Mitte Juni) sind die meisten Eier in Zysten embrioniert (Greco et al., 1988). Auf dem anatolischen Plateau sind im Juli Weibchen und Zysten zu finden. Maximale Nematodenreproduktionsraten von etwa 250 bzw. 75 bei Winter- bzw. Frühlingskichererbsen wurden in Mikroplots (Greco et al., 1988, 1993) und von 17 nach einer anfänglichen Populationsdichte von 2 Eiern / g Boden unter Feldbedingungen (17) beobachtet. Saxena et al., 1992). In Abwesenheit von Wirtspflanzen wurde nach 7 Monaten ein Rückgang der Anzahl der Nematodeneier im Boden im Bereich von 33-50% beobachtet. Im Allgemeinen entwickelt der Nematode nur eine Generation auf Frühlingskichererbsen, während es Hinweise auf eine zweite Generation gibt, die einen kleinen Teil der Nachkommen der ersten Generation umfasst, die auf Winterkichererbsen und Linsen vorkommen, die auf mit Befall befallenen Feldern gesät werden


Schlussfolgerungen

Zusammenfassend haben wir die erste Transkriptomanalyse der frühen parasitären J2-Stadien von durchgeführt H.. Avenae während einer inkompatiblen Infektion und identifizierte einige Gene, die bei Pflanzenparasitismus wichtig sein können. Darüber hinaus liefert eine vergleichende Analyse der Genexpression zwischen den präparasitären J2 und den frühen parasitären J2 zusätzliche Informationen zu einigen zentralen Genen, die wahrscheinlich entweder am Parasitismus oder am Nematodenstoffwechsel beteiligt sind. Obwohl das verfügbare Unigen-Set nicht vollständig genug ist, um den gesamten Lebenszyklus einer inkompatiblen Infektion zu analysieren, dient es dennoch als integrierte Ressource für Sequenzen und Funktionen zur weiteren Analyse und Identifizierung einiger zentraler Parasitismus-Gene und spezifischer Regulationswege während der frühen CCN-Invasion ein besseres Verständnis der molekularen Mechanismen des CCN-Parasitismus. Darüber hinaus wurden Kandidaten für die Verbesserung der CCN-Resistenz in Kulturpflanzen durch technische Techniken bereitgestellt. Die funktionelle Validierung einzelner Kandidaten und ihre jeweiligen Rollen beim CCN-Parasitismus müssen weiter untersucht werden.


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